細胞水煮裂解做western好嗎

2021-03-03 21:58:47 字數 2189 閱讀 8496

1樓:我痛得多漂亮

蛋白提取時使用蛋白裂解液將細胞裂解,然後離心分為上清液和下層沉澱,如果你說的是這個上清液的話,那麼這個上清液是細胞中的可溶性蛋白,一般包括細胞質的蛋白和細胞核的可溶性蛋白,下層沉澱主要是細胞碎片以及不可溶的蛋白以及染色質之類的。

請教:用培養的細胞做western

2樓:匿名使用者

做western blot需要多少細胞並不是一個固定的值這主要取決於蛋白的表達量,沒有一個絕對的量如果做細胞總蛋白的話,至少10的4次方細胞每微升蛋白裂解液。一般可以每泳道取10的5次方細胞每微升蛋白裂解液(即10微升上樣)

根據這個數量級,結合western blot結果進行調整即可確認做western blot需要多少細胞

如何提細胞的組蛋白做western blot?

3樓:

你的意思就是提取核蛋白,提取核蛋白和提取全蛋白用的裂解液是不一樣的。一般情況下我們都是買試劑盒,裡面包含有細胞裂解液和核裂解液,按照說明書實用就行了。

1 20mmol/l的hepe(ph 7.9)2 420mmol/l nacl

3 1.5mmol/l mgcl2

4 2%igepal

5 0.5mmo/l edta

6 20%甘油

7 1mmol/l dtt

8 0.25mmol/l pmsf

9 5ug/ml aprotinin

10 5ug/ml pepstatin

11 5ug/ml leupeptin

或者你可以按照這個配,這個是細胞核裂解液。

做法就是,你按順序提了全蛋白以後把上清棄掉,在沉澱中加入這個核裂解液,**然後離心,此時上清就是核蛋白了。

4樓:匿名使用者

通過有機溶劑或水溶法制備總蛋白

水溶液提取法

針對水、稀鹽、稀酸或鹼溶液中的蛋白質。稀鹽和緩衝系統的水溶液

對蛋白質穩定性好、溶解度大、是提取蛋白質最常用的溶劑 。

細胞裂解液: 50 mmol/l tris-hcl, 150 mmol/l nacl ,5 mmol/l edta, 1%np40 , 0.05% pmsf , 2μg/ml aprotinin, 0.

5μg/ml leupeptin , ph8.0

有機溶劑提取法

對於分子中非極性側鏈較多的蛋白質可用有機溶劑提取,包括乙醇、

丙酮和丁醇等。

通過層析或電洗脫法制備目的蛋白

bradford法

考馬斯亮藍g-250有紅、藍兩種不同顏色的形式,在一定濃度的乙醇和酸性條件下,可配成淡紅色的溶液,與蛋白結合後形成藍色化合物,該化合物在595nm處有最大吸收值,化合物顏色深淺與蛋白的濃度高低成正比 。(上樣量)

試劑:考馬斯亮藍工作液,0.1n鹽酸,雙蒸水,蛋白標準液( 將10mg/ml蛋白溶液稀釋至4.

0mg/ml, 3.5mg/ml, 3.0mg/ml, 2.

5mg/ml, 2.0mg/ml, 1.5mg/ml, 1.

0mg/ml, 0.5mg/ml。)

sds 是一種離子性的介面活性劑,它有強離子性的硫酸根離子也帶有疏水

性的長碳鏈.當 sds 與蛋白質混合時,它會以其碳鏈與蛋白質之疏水性胺

基酸結合將蛋白質包起來,而以硫酸根離子外露與水分子作用.大多數蛋

白質和 sds 的平均結合量是 1:1.4 (以重量為單位),而蛋白質結合固定

比例之 sds 後,由於 sds 帶強負價,使蛋白質原先的帶電價微不足道,且

每單位重量之蛋白質帶電價一致 (charge density),所以決定不同蛋白的泳動速率就只剩下分子大小一項因素

把硝酸纖維素濾膜放在密閉塑料袋或者培養皿中,根據濾膜面積以0.1ml/cm2的量加入加入一抗溶液與濾膜溫育。37℃一小時,4 ℃過夜。

倒掉一抗溶液,用pbs漂洗液濾膜3次,每次10min。

加入用封閉液配製的二抗,搖床上緩慢搖動, 37℃一小時,4 ℃過夜。

倒掉一抗溶液,用pbs漂洗液濾膜3次,每次10min

5樓:匿名使用者

差速離心先分離出細胞核,然後可以抽總核蛋白做wb。錢多的話有專門的試劑盒提組蛋白的。

6樓:

幹嘛非要提組蛋白呢?直接提取細胞總蛋白,然後用組蛋白的抗體檢測就是了,裂解液就用一般的就是了

WB實驗時,細胞裂解液如何配置

組織裂解液 全細胞蛋提取 1 tris hcl 50mmol l ph 7.42 nacl 150 mmol l 3 去氧膽酸鈉 0.25 4 np 40或triton x 100 1 5 edta 1 mmol l 6 pmsf 1 mmol l 7 aprotinin 1 g ml 8 leup...

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