為什麼製備好的感受態細胞放冰箱過夜後,轉化率會提高

2021-03-03 20:57:17 字數 2429 閱讀 7257

1樓:阿魯巴星人

剛製作完成的時候,轉化率最高。

然後放入冰箱,只要凍融過,轉化率就會下降,並且隨著儲存時間的增加而下降。

製備出來的感受態細胞在什麼時候做轉化最佳

2樓:阿魯巴星人

當場做出來的,當時做轉化,轉化效率最高。

儲存在-80冰箱的感受態,儲存40天以後,感受態效率會有明顯下降。

經轉化的感受態細胞,塗完板後,還有剩餘的菌液,為什麼是放在-4度儲存,為什麼不能放在-20度??

3樓:匿名使用者

是4度吧。。放4度是抑制其生長。。若放在-20度,雖然經過轉化後復甦,細胞是有些恢復了活性,但是畢竟還是很脆弱,-20度冷凍細胞,然後再解凍使用的話,很容易使細胞死亡的,加之如果本來細胞的轉化效率就不是很高的話,可能再次塗板的結果是沒有菌落長出。。。

一般,我們做實驗,剩餘對的菌液是不會再用的,一是不靠譜,二是若是塗的板沒長單菌落的話,那麼這個剩餘的菌液也就沒什麼作用了:若是長出了,大可以抽提質粒,下次用時再轉,或者搖菌後用甘油保種,下次用時可選擇劃線,也可以直接搖菌。。。

個人感覺那個剩餘的菌液,不存也罷。。不知道你那邊存起來時為了???

4樓:匿名使用者

為什麼要儲存?都塗上不就完了,如果轉化率較高,不必用離心,吸取200微升塗上就行了,轉化率低的時候離一下心倒掉上清留一兩百微升塗板。一般4度短時間儲存,-20度長期儲存。

菌液反覆凍融會影響菌種活力。如果一兩天內就要用還是放4度好。

感受態細胞為什麼要放倒-80度儲存

5樓:魔力

您好,感受態細胞收到過點選或者氯化鈣氯化銫等的處理,細胞壁以及細胞膜都有損傷,可以說是十分脆弱的細胞,如果放於-20℃儲存,時間長了細胞內部液化度較高的情況下,細胞會由於流動性的原因造成不可逆損傷,甚至死亡。所以要放於-80攝氏度。

6樓:匿名使用者

首先你要明白,凍存的細胞,溫度越低,儲存的時間越長,像哺乳類細胞凍-80儲存半年沒問題,但你如果要儲存一年以上,還是液氮更可靠

我不能說明為什麼要放-80,但我可以告訴你,放-20,時間一長,感受態轉化活性急劇下降,而且容易死掉。

7樓:匿名使用者

康體生命的感受態細胞都是-80度儲存的,dh5α,dh10β,stbl3,jm109,bl21(de3),top10這些都是包乾冰、包運送的,平均下來一支只要3.5

感受態細胞的製備時有什麼注意事項

8樓:天寂無痕

1、培養溫度。較低的溫度培養有利於感受態的形成,這樣可以獲得較高的感受態,但太低又不實用,因而產生了 inoue 的高效感受態製備方法,它實際是利用了所有有利於感受態的文獻而得出的一

個非常理想方法。

2、在儲存感受態時,dmso 要比甘油的效果要好,它會使感受態的效率增加。

3、液氮速凍也會使感受態的效率提高,因此推薦用液氮速凍感受態,然後儲存於超低溫冰箱內。

4、凍存的感受態用一次拿一管,不要反覆凍融。化凍之後立即使用,不要冰上放太久。

5、操作時可以輕彈輕甩,儘量避免用移液器吹吸。

9樓:y神級第六人

(1)質粒dna的質量和濃度:

用於轉化的質粒dna應主要是超螺旋態的,轉化率與外源dna的濃度在一定範圍內成正比,但當加入的外源dna的量過多或體積過大時,則會使轉化率下降。一般地,dna溶液的體積不應超過感受態細胞體積的5%,1ng的cccdna即可使50ul的感受態細胞達到飽和。對於以質粒為載體的重組分子而言,分子量大的轉化效率低,實驗證明,大於30kb的重組質粒將很難進行轉化。

此外,重組dna分子的構型與轉化效率也密切相關,環狀重組質粒的轉化率較分子量相同的線性重組質粒高10~100倍,因此重組dna大都構成環狀雙螺旋分子。

(2)感受態細胞的質量:

所用的cacl2等試劑均需是最高純度的,並用最純淨的水配製,最好分裝儲存於4℃

(3)細胞的生長狀態和密度

最好從-70℃或-20℃甘油儲存的菌種中直接轉接用於製備感受態細胞的菌液。不要用已經過多次轉接,及貯存在4℃的培養菌液。細胞生長密度以每毫升培養液中的細胞數在5×107個左右為佳。

即應用對數期或對數生長前期的細菌,可通過測定培養液的od600控制。對tg1菌株,od600為0.5時,細胞密度在5×107個/ml左右。(應注意od600值與細胞數之間的關係隨菌株的不同而不同)。

密度過高或不足均會使轉化率下降。

(二)感受態細胞轉化中的影響:

整個操作過程均應在無菌條件下進行,所用器皿,如離心管,移液槍頭等最好是新的,並經高壓滅菌處理。所有的試劑都要滅菌,且注意防止被其它試劑、dna酶或雜dna所汙染,否則均會影響轉化效率或雜dna的轉入。整個操作均需在冰上進行,不能離開冰浴,否則細胞轉化率將會降低。

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